操作指南 (以下是 SparkJade 的推荐方案。本方案仅提供指导原则,请根据您的具体实验进行修改)
1. 体外生物发光检测 (仅供参考)
(1) 用蒸馏水溶解 D-Luciferin Potassium Salt,配制成 100 mM 的储存液 (200×;浓度 30 mg/mL)。混匀后立即使用或分装于 -20℃ 或 -80℃ 冻存,避免反复冻融。
(2) 用预热好的组织培养基 1:200 稀释储存液,配制工作液 (终浓度 150 µg/mL)。
(3) 去除培养细胞的培养基直至无残留。
(4) 待图像分析前,向细胞内添加 1× 荧光素工作液,然后进行图像分析 (或者细胞放在 37℃ 短时间孵育后检测可增强信号)。
2. 活体成像分析(仅供参考)
(1) 用无菌的 DPBS ( 不含 Mg2+ 和 Ca2+) 配制 D-Luciferin Potassium Salt 工作液 (15 mg/mL),0.2 μM 滤膜过滤除菌。混匀后立即使用或分装于 -20℃ 或 -80℃ 冻存,避免反复冻融。一旦使用,放到 4℃ 解冻,保持冰冷且避光。
(2) 注射量取决于注射方式,具体如下:
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注射方式
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剂量
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静脉注射 (25-27 gauge 针头)
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按 10 μL/g 体重浓度,加入相应体积的 15 mg/mL 荧光素工作液
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腹腔注射 (25-27 gauge 针头)
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按 10 μL/g 体重浓度,加入相应体积的 15 mg/mL 荧光素工作液
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肌肉注射 (27 gauge 针头)
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50 μL,浓度为 1-2 mg/mL 荧光素工作液
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鼻内注射 (pipette)
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50 μL,浓度为 3 mg/mL 荧光素工作液
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(3) 注射入体内 10-20 分钟 (待光信号达到最强稳定平台期),再进行成像分析。
【注】:注射方式、动物类型以及体重等都会影响信号的发射,因此建议每次实验都要做荧光素酶动力学曲线,确定最佳信号平台期和最佳的检测时间。
3. 基因检测实验示例(仅供参考)
(1) 在无菌水中制备 100 mM 荧光素储备溶液。立即使用,或一次性等份使用,并在 -20℃ 下储存,避免冻融循环,避免暴露在阳光下。
(2) 在 25 mM tricine 缓冲液 (pH 7.8) 中制备含有 3 mM ATP、1 mM DTT 和 15 mM MgSO4 的 1 mM D-Luciferin 工作溶液。
(3) 用移液管将 5-10 μL 细胞裂解液移到微孔板中。使用不含裂解物的裂解试剂或缓冲液作为空白对照。
(4) 根据说明,使用荧光素工作溶液为光度计注入底部。
(5) 立即注入 200 μL D-Luciferin 工作溶液,结合时间为 10 秒。
注意事项
a) D-Luciferin 在 100 mM 的水性缓冲液 (pH 6.1-6.5) 中易于溶解。储备溶液可在不含 ATP 的水中制成,并储存在 -20℃ 的温度下,以防光线照射。游离酸必须用适当的碱中和以溶解。在较高的 pH 值下,荧光素经历碱催化的脱氢脲醛生成,以及外消旋成 L-异构体。
b) D-Luciferin 可用于任何现有的报告基因检测或 ATP 检测系统。
c) 如果检测 ATP,需要戴手套和使用不含 ATP 的容器,尽量减少所有可能的 ATP 污染源。只使用无菌的不含 ATP 的水和试剂。所有试剂制剂使用蒸压水。