操作指南(以下是 SparkJade 的推荐方案。本方案仅提供指导原则,请根据您的具体实验进行修改)
1. CMFDA 储存液 (10 mM) 的配制
将本品取出回温至室温。用 215.1 µL DMSO 溶解 1 mg CMFDA,充分混匀即得到 10 mM 的储存液。第一次使用时,建议母液现配现用。且溶解后的试剂尽可能在短时间内使用,以保证实验效果。母液遇水极易分解,若单次不能用完,建议分装保存,用封口膜封口,并严格做到≤-20℃密封干燥保存。【避免反复冻融】
【注】:
① 本品容易吸潮,从冰箱取出后,请确认在干燥的环境放至室温后再开封。由于试剂极其微量,开封前请将其短暂离心,以保证粉末落入管底。
② 所用 DMSO 必须保证高质量,新鲜无水,否则将会导致醋酸酯水解,使荧光染料无法进入细胞,影响实验效果。
③ 建议您在正式实验前先摸索一下细胞量、荧光探针的终浓度、培养时间等,找到最佳实验条件。
2. CMFDA 工作液 (0.5-5 µM) 的配制
使用前用无血清培养基稀释上述储存液至工作液浓度 (0.5-25 µM),并将探针工作液于 37℃ 预热。
【注】:针对不同的实验目的所需的工作液浓度不同,需根据具体情况进行优化。一般来讲:对于长期染色 (至少 3 天) 或快速分裂细胞的染色,推荐工作液浓度 5-25 µM。对于短期染色,如细胞活力分析等实验,推荐工作液浓度 0.5-5 µM。为避免过度加载造成细胞毒性,维持正常的细胞生理活性,建议在取得有效结果的基础上尽量使用最低探针浓度。
3. 染色方法
3.1 悬浮细胞染色
1)离心收集细胞,并吸除上清。用预热的探针工作液轻柔地重悬细胞。
2)于细胞正常生长条件下孵育 15-45 分钟。
3)离心并去除探针工作液。
4)换用新鲜培养基继续培养 30 分钟。
5)清洗细胞,如需固定请参考如下步骤【4. 固定和通透处理】。
3.2 贴壁细胞的染色
1)吸除培养液。
2)轻轻加入预热的探针工作液。
3)于细胞正常生长条件下孵育 15-45 分钟。
4)换用新鲜培养基继续培养 30 分钟。
5)清洗细胞,如需固定,请参考后续步骤【4. 固定和通透处理】。
4. (可选) 固定和通透处理
4.1 固定前,细胞需用 PBS 充分清洗。
【注】:当细胞包被在含有巯基或盖玻片表面上时,该清洗步骤尤为重要。
4.2 用 3.7% 多聚甲醛室温固定细胞 15 分钟。
4.3 固定后于 PBS 中漂洗细胞。
4.4 (可选) 后续如进行其他抗体染色,需对细胞进行通透处理,可将上述处理的细胞于预冷的丙酮中孵育10 min。
5 镜检
将上述处理的细胞用 PBS 漂洗后,进行检测。该探针呈绿色荧光,其 Ex=492 nm,Em=517 nm。