操作指南(以下是我们的推荐方案。本方案仅提供指导原则,请根据您的具体实验进行修改)。
1. Fluo-3 AM 工作液的配制
1.1 制备储存液
用无水 DMSO 稀释 Fluo-3 AM 去配制 2-5 mM 的储备液。
【注】: Fluo-3 AM 储存液建议分装后于 -20℃ 或 -80℃ 避光保存。
1.2 工作液的配制
用预热好的 HBSS 稀释储存液,配制成 1-10 μM 的 Fluo-3 AM 工作液。
【注 1】: 请根据实际情况调整 Fluo-3 AM 工作液浓度,且现用现配。
【注 2】: Fluo-3 AM 工作液制备时,有时需要往 Fluo-3 AM+DMSO 中加入适量的 20% Pluronic F-127 溶液,以增强 AM 探针的水溶性;Pluronic F-127 可以防止 AM 探针在溶液中聚合并促使探针更好进入细胞。但 PluronicF-127 可降低 AM 探针的稳定性,因此只建议在配制工作液时加入,不建议加入储存液长期保存。
2. 细胞染色 (悬浮细胞)
2.1 离心收集细胞,加入 PBS 洗涤两次,每次 5 分钟。细胞密度在1×106/mL
2.2 加入 1 mL Fluo-3 AM 工作液,室温孵育 5-30 分钟。
【注 】: Fluo-3 AM 染料在大部分细胞中的推荐工作浓度为 4-5 μM,具体使用浓度需根据实验要求进行优化。为了避免过度加载造成细胞毒性,建议在取得有效结果的基础上尽量使用最低探针浓度。
2.3 400 g,离心 3-4 分钟,弃去上清。
2.4 加入 PBS 洗涤细胞两次,每次 5 分钟。
2.5 用 1 mL HBSS 重悬细胞后,使用荧光显微镜或流式细胞仪进行观察。
3. 细胞染色 (贴壁细胞)
3.1 将贴壁细胞培养于无菌盖玻片上。
3.2 从培养基中移出盖玻片,吸除多余培养基。
3.3 加入 100 μL 染料工作液,轻轻晃动使其完全覆盖细胞,孵育 5-30 分钟。
3.4 吸去染料工作液,用培养基洗 2-3 次,每次 5 分钟,使用荧光显微镜进行观察。