操作指南 (以下是 SparkJade 的推荐方案。本方案仅提供指导原则,请根据您的具体实验进行修改)
1. 制备染色液
1.1 配置储存液:将低温保存的固体室温平衡至少 20 分钟。对管子进行离心,将粉末集中在管底。使用无水 DMSO 或无水乙醇溶解 Filipin III,配置浓度为 1-10 mM 的储存液。
【注】:Filipin III 溶液对光和空气都非常敏感,建议将配置好的储存液进行分装,在 -80°C 避光保存,避免反复冻融。
1.2 配置工作液:使用合适的缓冲液 (如:PBS、HBSS 或其他生理缓冲液) 稀释储存液,配制浓度为 1-250 μM 的工作液。
【注】:请根据实际情况调整工作液浓度,现用现配。
2. 细胞染色
2.1 吸弃培养基,使用 PBS 清洗细胞 2-3 次。
2.2 使用 4% 多聚甲醛固定细胞,室温固定 15-20 分钟。
2.3 固定完成后,使用 PBS 清洗 2-3 次,每次 5 分钟。
2.4 向培养孔中加入 Filipin III 工作液,需完全覆盖住细胞,室温避光孵育 30 分钟-2 小时。不同细胞最佳孵育时间不同,请根据具体实验需求及染色效果自行调整。
2.5 孵育结束后吸弃染料工作液,使用 PBS 清洗 2~3 次。
3. 组织切片染色 (冰冻切片):
3.1 将切片放置在通风处,室温晾干 20-30 分钟。
3.2 使用 4% 多聚甲醛浸没切片,室温固定 30 分钟。
3.3 小心吸弃固定液,使用 PBS 清洗切片 2-3 次,每次 5 分钟。
3.4 向切片上滴加 Filipin III 工作液,需完全覆盖住切片,室温避光孵育 30 分钟-2 小时。请根据实际情况调整染色方案。
3.5 孵育结束后吸弃染料工作液,使用 PBS 清洗 2~3 次。
3.6 如需封片,建议使用水性荧光封固剂。
4. 显微镜检测:Filipin III 的激发光范围是 340-380 nm,发射光范围是 385-470 nm。
注意事项:
1、Filipin III 与胆固醇的亲和力非常高结合,但 Filipin III 具有快速光漂白的特点,建议染色后立即观察。
2、Filipin III 溶液对光和空气都非常敏感。条件允许的话,配置好的溶液分装冻存,且充入情性气体,-80°C 分装冻存,避免反复冻融。
3、Filipin III 在紫外激发下仅产生适度的自然荧光,与其他荧光探针相比荧光强度较弱,在使用共聚焦显微镜观察时需要注意这点。
4、荧光染料均存在淬灭问题,请尽量注意避光,以减缓荧光淬灭。
5、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。