操作指南(以下是 SparkJade 的推荐方案。本方案仅提供指导原则,请根据您的具体实验进行修改)
1. 溶液配制
1.1 从冰箱取出 FerroOrange,置于室温解冻,将其置于微量离心机内低速离心。将瓶内的粉末离心到管底后,再开盖。
1.2 往一管 FerroOrange (24 μg) 内加入 35 μL DMSO,用枪反复吹吸混匀,使其完全溶解制备 1 mM FerroOrange 储存液。若单次不能用完储存液,请分装并置于 -20℃ 避光保存,一个月内使用。
1.3 于正式实验前,用中性缓冲液或无血清培养基来稀释 1 mM FerroOrange 储存液到所需工作浓度 (比如: 1 μM),工作液需现配现用,尽快用完。【注】酸性溶液会氧化 FerroOrange,严重影响探针的效率。
2. 荧光显微镜操作方法
2.1. 细胞接种于荧光培养皿中,在 37℃,5% CO2 培养箱中孵育过夜。
2.2. 弃去上清液,并用 HBSS 或无血清培养基洗涤细胞 3 次。
2.3. 更换含有药物的培养基,在 37℃,5% CO2 培养箱中孵育。
【注】请根据药物特性优化孵育时间。
2.4. 加入浓度为 1 μM 的 FerroOrange 工作液,在 37℃,5% CO2 培养箱中孵育 30 分钟。
【注】加入 FerroOrange 染色剂后直接观察,不要洗涤。
2.5. 在荧光显微镜下观察细胞。
3. 流式细胞仪操作方法
3.1 将 1 x 105个 HeLa 细胞 (MEM 培养基,含 10% 胎牛血清和 1% 青霉素-链霉素) 接种到 6 孔板中,并在 37℃、5% CO2 孵育箱中培养过夜。
3.2 用无血清培养基 (2 mL) 三次洗涤细胞。
3.3 向对照组细胞中加入无血清培养基 (1 mL),硫酸铵亚铁处理组加入10 mM 的硫酸铵亚铁(10 μL) (最终浓度:100 μM) 的无血清培养基。
3.4 在 37℃ 孵育箱中孵育细胞 20 分钟,并用 HBSS (1 mL) 三次洗涤细胞。
3.5 经胰蛋白酶消化 (250 µL) 后,用含血清的培养基 (1 mL) 停止反应,将 1.25 mL 的细胞悬液转移到微离心管中。
3.6 将细胞悬液以 1500 转/分的速度离心 3 分钟。
3.7 丢弃上清液,并向微离心管中加入 HBSS (1 mL),通过振荡混合。
3.8 将细胞悬液以 1500 转/分的速度离心 3 分钟,并丢弃上清液。
3.9 向细胞中加入 1 μM 的 FerroOrange 和无血清培养基的 MEM (300 μL)。
3.10 在 37℃ 孵育箱中孵育细胞 15-30 分钟。
3.11 染色细胞经过细胞过滤器过滤,并使用流式细胞仪分析样本。
4. 荧光检测
4.1 对于荧光显微镜:通用的 G 激发滤片比如 Cv3 检测用的滤片。
4.2 对于激光显微镜和流式细胞仪: 532 nm、514 nm 或 561 nm 激光器用于激发。实在没有,亦可用 488 nm 激光器。发射波长为 580 nm。
5. 荧光酶标仪操作方法
5.1 进行组别设置
样品 1:无添加剂 (仅 HeLa 细胞)。
样品 2:添加了铁螯合试剂 2,2`-bipyridyl (Bpy) 的 HeLa 细胞。
样品 3:添加铁 (硫酸铵铁) 的 HeLa 细胞。
5.2 在 96 孔黑板 (透明底) 上接种 100 µL HeLa 细胞悬液,使其达到 10000 cells/well,在 37℃,5% CO2 培养箱中过夜培养。
5.3 样品 3 的细胞用 MEM (不含 FBS) 100 µL 洗涤 3 次。
5.4 向样品 3 中添加 100 µL 硫酸铵铁 (II)/MEM (不含 FBS) (最终浓度: 100 µM),在 37℃ 5% CO2 培养箱中静置 30 分钟。
5.5 用 100 µL HBSS 洗涤所有孔的细胞 3 次。
5.6 向样品 1 和 3 中添加 100 µL 的 1 µM FerroOrange 工作液,向样品 2 中添加 100 µL 含有 FerroOrange (最终浓度: 1 µM) 和 Bpy (最终浓度: 100 µM) 的 HBSS 溶液,在 37℃,5% CO2 培养箱中培养 30 分钟。
5.7 用多功能读板器检测各样品的荧光强度 (Ex: 543 nm,Em: 580 nm)。